膵島移植と再生医療の融合
「はじめに」日本膵・膵島移植研究会や日本移植学会の関係者の多大な尽力により, わが国においても, 2020年4月にようやく脳死ドナーおよび心停止ドナーからの同種膵島移植が保険収載された. これにより, 膵島移植が重症糖尿病に対する一つの治療オプションとして加わることとなり, 移植医療が抱える大きな課題である高侵襲性を解消する目処がついたと言えよう. しかし, 今後より多くの重症糖尿病患者へこの新たな治療オプションを提示していくためには, 移植医療の残された課題である, ドナー不足と免疫抑制剤による副作用に対する有効な対策を打ち出していくことが, 極めて重要である. 再生医療との融合は, 膵島移...
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| Published in | 移植 Vol. 56; no. 2; pp. 141 - 147 |
|---|---|
| Main Author | |
| Format | Journal Article |
| Language | Japanese |
| Published |
一般社団法人 日本移植学会
2021
日本移植学会 |
| Subjects | |
| Online Access | Get full text |
| ISSN | 0578-7947 2188-0034 |
| DOI | 10.11386/jst.56.2_141 |
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| Abstract | 「はじめに」日本膵・膵島移植研究会や日本移植学会の関係者の多大な尽力により, わが国においても, 2020年4月にようやく脳死ドナーおよび心停止ドナーからの同種膵島移植が保険収載された. これにより, 膵島移植が重症糖尿病に対する一つの治療オプションとして加わることとなり, 移植医療が抱える大きな課題である高侵襲性を解消する目処がついたと言えよう. しかし, 今後より多くの重症糖尿病患者へこの新たな治療オプションを提示していくためには, 移植医療の残された課題である, ドナー不足と免疫抑制剤による副作用に対する有効な対策を打ち出していくことが, 極めて重要である. 再生医療との融合は, 膵島移植にとって数ある対策の中でも, 現状では最も効果的な戦略の一つと考えられている. 元来, 移植医療と再生医療は密接に関連しており, 現行の移植医療が抱えるさまざまな課題を, 今後再生医療が解消することが期待されている. |
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| AbstractList | 「はじめに」日本膵・膵島移植研究会や日本移植学会の関係者の多大な尽力により, わが国においても, 2020年4月にようやく脳死ドナーおよび心停止ドナーからの同種膵島移植が保険収載された. これにより, 膵島移植が重症糖尿病に対する一つの治療オプションとして加わることとなり, 移植医療が抱える大きな課題である高侵襲性を解消する目処がついたと言えよう. しかし, 今後より多くの重症糖尿病患者へこの新たな治療オプションを提示していくためには, 移植医療の残された課題である, ドナー不足と免疫抑制剤による副作用に対する有効な対策を打ち出していくことが, 極めて重要である. 再生医療との融合は, 膵島移植にとって数ある対策の中でも, 現状では最も効果的な戦略の一つと考えられている. 元来, 移植医療と再生医療は密接に関連しており, 現行の移植医療が抱えるさまざまな課題を, 今後再生医療が解消することが期待されている. |
| Author | 後藤, 昌史 |
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| Copyright | 2021 一般社団法人 日本移植学会 |
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| CorporateAuthor | 東北大学消化器外科 東北大学医学系研究科移植再生医学分野 |
| CorporateAuthor_xml | – name: 東北大学消化器外科 – name: 東北大学医学系研究科移植再生医学分野 |
| DOI | 10.11386/jst.56.2_141 |
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| ISSN | 0578-7947 |
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| References | 19) Rezania A, Bruin JE, Arora P, et al. Reversal of diabetes with insulin-producing cells derived in vitro from human pluripotent stem cells. Nat Biotechnol 2014; 32: 1121-1133. 15) Fathi I, Nishimura R, Imura T, et al. KRP-203 is a desirable immunomodulator for islet allotransplantation. Transplantation. in press. 6) Kawakami Y, Iwata H, Gu Y, et al. Modified subcutaneous tissue with neovascularization is useful as the site for pancreatic islet transplantation. Cell Transplant 2000; 9: 729-732. 3) Yin D, Ding JW, Shen J, et al. Liver ischemia contributes to early islet failure following intraportal transplantation: benefits of liver ischemic-preconditioning. Am J Transplant 2006; 6: 60-68. 4) Juang JH, Bonner-Weir S, Ogawa Y, et al. Outcome of subcutaneous islet transplantation improved by polymer device. Transplantation 1996; 61: 1557-1561. 2) Goto M, Johansson H, Maeda A, et al. Low molecular weight dextran sulfate prevents the instant blood-mediated inflammatory reaction induced by adult porcine islets. Transplantation 2004; 77: 741-747. 7) Luan NM, Iwata H. Long-term allogeneic islet graft survival in prevascularized subcutaneous sites without immunosuppressive treatment. Am J Transplant 2014; 14: 1533-1542. 18) Bruin JE, Rezania A, Xu J, et al. Maturation and function of human embryonic stem cell-derived pancreatic progenitors in macroencapsulation devices following transplant into mice. Diabetologia 2013; 56: 1987-1998. 17) Kroon E, Martinson LA, Kadoya K, et al. Pancreatic endoderm derived from human embryonic stem cells generates glucose-responsive insulin-secreting cells in vivo. Nat Biotechnol 2008; 26: 443-452. 16) Niu D, Wei HJ, Lin L, et al. Inactivation of porcine endogenous retrovirus in pigs using CRISPR-Cas9. Science 2017; 357 (6357) : 1303-1307. 5) Uematsu SS, Inagaki A, Nakamura Y, et al. The optimization of the prevascularization procedures for improving subcutaneous islet engraftment. Transplantation 2018; 102: 387-395. 8) Pepper AR, Gala-Lopez B, Pawlick R, et al. A prevascularized subcutaneous device-less site for islet and cellular transplantation. Nat Biotechnol 2015; 33: 518-523. 11) Matsumoto S, Tan P, Baker J, et al. Clinical porcine islet xenotransplantation under comprehensive regulation. Transplant Proc 2014; 46: 1992-1995. 10) Vegas AJ, Veiseh O, Gurtler M, et al. Long-term glycemic control using polymer-encapsulated human stem cell-derived beta cells in immune-competent mice. Nat Med 2016; 22: 306-311. 13) Harrington S, Williams J, Rawal S, et al. Hyaluronic acid/collagen hydrogel as an alternative to alginate for long-term immunoprotected islet transplantation. Tissue Eng Part A 2017; 23 (19-20) : 1088-1099. 9) Nishimura R, Nishioka S, Fujisawa I, et al. Tacrolimus inhibits the revascularization of isolated pancreatic islets. PLoS One 2013; 8: e56799. 12) Dufrane D, Goebbels RM, Gianello P. Alginate macroencapsulation of pig islets allows correction of streptozotocin-induced diabetes in primates up to 6 months without immunosuppression. Transplantation 2010; 90: 1054-1062. 14) Carlsson PO, Espes D, Sedigh A, et al. Transplantation of macroencapsulated human islets within the bioartificial pancreas betaAir to patients with type 1 diabetes mellitus. Am J Transplant 2018; 18: 1735-1744. 1) Bennet W, Sundberg B, Lundgren T, et al. Damage to porcine islets of Langerhans after exposure to human blood in vitro, or after intraportal transplantation to cynomologus monkeys: protective effects of sCR1 and heparin. Transplantation 2000; 69: 711-719. 20) Yamaguchi T, Sato H, Kato-Itoh M, et al. Interspecies organogenesis generates autologous functional islets. Nature 2017; 542 (7640) : 191-196. |
| References_xml | – reference: 17) Kroon E, Martinson LA, Kadoya K, et al. Pancreatic endoderm derived from human embryonic stem cells generates glucose-responsive insulin-secreting cells in vivo. Nat Biotechnol 2008; 26: 443-452. – reference: 2) Goto M, Johansson H, Maeda A, et al. Low molecular weight dextran sulfate prevents the instant blood-mediated inflammatory reaction induced by adult porcine islets. Transplantation 2004; 77: 741-747. – reference: 11) Matsumoto S, Tan P, Baker J, et al. Clinical porcine islet xenotransplantation under comprehensive regulation. Transplant Proc 2014; 46: 1992-1995. – reference: 8) Pepper AR, Gala-Lopez B, Pawlick R, et al. A prevascularized subcutaneous device-less site for islet and cellular transplantation. Nat Biotechnol 2015; 33: 518-523. – reference: 4) Juang JH, Bonner-Weir S, Ogawa Y, et al. Outcome of subcutaneous islet transplantation improved by polymer device. Transplantation 1996; 61: 1557-1561. – reference: 16) Niu D, Wei HJ, Lin L, et al. Inactivation of porcine endogenous retrovirus in pigs using CRISPR-Cas9. Science 2017; 357 (6357) : 1303-1307. – reference: 5) Uematsu SS, Inagaki A, Nakamura Y, et al. The optimization of the prevascularization procedures for improving subcutaneous islet engraftment. Transplantation 2018; 102: 387-395. – reference: 13) Harrington S, Williams J, Rawal S, et al. Hyaluronic acid/collagen hydrogel as an alternative to alginate for long-term immunoprotected islet transplantation. Tissue Eng Part A 2017; 23 (19-20) : 1088-1099. – reference: 7) Luan NM, Iwata H. Long-term allogeneic islet graft survival in prevascularized subcutaneous sites without immunosuppressive treatment. Am J Transplant 2014; 14: 1533-1542. – reference: 1) Bennet W, Sundberg B, Lundgren T, et al. Damage to porcine islets of Langerhans after exposure to human blood in vitro, or after intraportal transplantation to cynomologus monkeys: protective effects of sCR1 and heparin. Transplantation 2000; 69: 711-719. – reference: 3) Yin D, Ding JW, Shen J, et al. Liver ischemia contributes to early islet failure following intraportal transplantation: benefits of liver ischemic-preconditioning. Am J Transplant 2006; 6: 60-68. – reference: 9) Nishimura R, Nishioka S, Fujisawa I, et al. Tacrolimus inhibits the revascularization of isolated pancreatic islets. PLoS One 2013; 8: e56799. – reference: 10) Vegas AJ, Veiseh O, Gurtler M, et al. Long-term glycemic control using polymer-encapsulated human stem cell-derived beta cells in immune-competent mice. Nat Med 2016; 22: 306-311. – reference: 19) Rezania A, Bruin JE, Arora P, et al. Reversal of diabetes with insulin-producing cells derived in vitro from human pluripotent stem cells. Nat Biotechnol 2014; 32: 1121-1133. – reference: 20) Yamaguchi T, Sato H, Kato-Itoh M, et al. Interspecies organogenesis generates autologous functional islets. Nature 2017; 542 (7640) : 191-196. – reference: 12) Dufrane D, Goebbels RM, Gianello P. Alginate macroencapsulation of pig islets allows correction of streptozotocin-induced diabetes in primates up to 6 months without immunosuppression. Transplantation 2010; 90: 1054-1062. – reference: 15) Fathi I, Nishimura R, Imura T, et al. KRP-203 is a desirable immunomodulator for islet allotransplantation. Transplantation. in press. – reference: 14) Carlsson PO, Espes D, Sedigh A, et al. Transplantation of macroencapsulated human islets within the bioartificial pancreas betaAir to patients with type 1 diabetes mellitus. Am J Transplant 2018; 18: 1735-1744. – reference: 18) Bruin JE, Rezania A, Xu J, et al. Maturation and function of human embryonic stem cell-derived pancreatic progenitors in macroencapsulation devices following transplant into mice. Diabetologia 2013; 56: 1987-1998. – reference: 6) Kawakami Y, Iwata H, Gu Y, et al. Modified subcutaneous tissue with neovascularization is useful as the site for pancreatic islet transplantation. Cell Transplant 2000; 9: 729-732. |
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| SourceID | medicalonline jstage |
| SourceType | Publisher |
| StartPage | 141 |
| SubjectTerms | Embryonic Stem cells induced Pluripotent Stem cells islet transplantation islets regenerative medicine subcutaneous islet transplantation type 1 diabetes |
| Title | 膵島移植と再生医療の融合 |
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| ispartofPNX | 移植, 2021, Vol.56(2), pp.141-147 |
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