人工心肺回路内圧上昇における白血球の関与

人工心肺使用時の異常な回路内圧上昇は国内外問わず報告されており，人工肺交換を要する可能性のある危険な現象である。その原因として血栓形成などが推測されているが，血栓の存在を証明できた報告は少なく，回路内圧上昇の原因やメカニズムは解明されていなかった。そこで，我々は模擬体外循環回路とブタの血液を使用して，回路内圧上昇の原因を探った。その結果，模擬回路の狭小部位に白血球由来細胞外 DNA が付着しており，この細胞外 DNA が模擬回路の回路内圧を上昇させていると結論づけた。白血球の中でも老化白血球や活性化白血球が狭小部位を通過する際にその細胞膜を損傷し，DNA が細胞外に放出されるのだと考えられた。...

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Published inCardiovascular Anesthesia Vol. 29; no. 1; pp. 37 - 44
Main Authors 十時 崇彰, 八島 望, 伊藤 隆史
Format Journal Article
LanguageJapanese
Published 一般社団法人　日本心臓血管麻酔学会 01.09.2025
日本心臓血管麻酔学会
Subjects
ヘパリン
人工心肺回路内圧上昇
白血球
細胞外 DNA
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ISSN1342-9132
1884-7439
DOI10.11478/jscva.2024-1-008

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Abstract 人工心肺使用時の異常な回路内圧上昇は国内外問わず報告されており，人工肺交換を要する可能性のある危険な現象である。その原因として血栓形成などが推測されているが，血栓の存在を証明できた報告は少なく，回路内圧上昇の原因やメカニズムは解明されていなかった。そこで，我々は模擬体外循環回路とブタの血液を使用して，回路内圧上昇の原因を探った。その結果，模擬回路の狭小部位に白血球由来細胞外 DNA が付着しており，この細胞外 DNA が模擬回路の回路内圧を上昇させていると結論づけた。白血球の中でも老化白血球や活性化白血球が狭小部位を通過する際にその細胞膜を損傷し，DNA が細胞外に放出されるのだと考えられた。さらに，ヘパリンが回路内圧上昇に関与している可能性が示唆された。ヘパリンは心臓手術において一般的に使用される抗凝固薬であるが，過去の報告で白血球にも影響を与えることが示されている。細胞外 DNA は模擬回路における回路内圧上昇の原因だけでなく，ダメージ関連分子パターン（Damage-associated molecular patterns、DAMPs）の一つであるため，人工心肺使用時に凝固線溶系の活性化や炎症反応を引き起こす原因となっているかもしれない。
AbstractList 「抄録」人工心肺使用時の異常な回路内圧上昇は国内外問わず報告されており, 人工肺交換を要する可能性のある危険な現象である. その原因として血栓形成などが推測されているが, 血栓の存在を証明できた報告は少なく, 回路内圧上昇の原因やメカニズムは解明されていなかった. そこで, 我々は模擬体外循環回路とブタの血液を使用して, 回路内圧上昇の原因を探った. その結果, 模擬回路の狭小部位に白血球由来細胞外DNAが付着しており, この細胞外DNAが模擬回路の回路内圧を上昇させていると結論づけた. 白血球の中でも老化白血球や活性化白血球が狭小部位を通過する際にその細胞膜を損傷し, DNAが細胞外に放出されるのだと考えられた. さらに, ヘパリンが回路内圧上昇に関与している可能性が示唆された. ヘパリンは心臓手術において一般的に使用される抗凝固薬であるが, 過去の報告で白血球にも影響を与えることが示されている. 細胞外DNAは模擬回路における回路内圧上昇の原因だけでなく, ダメージ関連分子パターン(Damage-associated molecular patterns, DAMPs)の一つであるため, 人工心肺使用時に凝固線溶系の活性化や炎症反応を引き起こす原因となっているかもしれない.
人工心肺使用時の異常な回路内圧上昇は国内外問わず報告されており，人工肺交換を要する可能性のある危険な現象である。その原因として血栓形成などが推測されているが，血栓の存在を証明できた報告は少なく，回路内圧上昇の原因やメカニズムは解明されていなかった。そこで，我々は模擬体外循環回路とブタの血液を使用して，回路内圧上昇の原因を探った。その結果，模擬回路の狭小部位に白血球由来細胞外 DNA が付着しており，この細胞外 DNA が模擬回路の回路内圧を上昇させていると結論づけた。白血球の中でも老化白血球や活性化白血球が狭小部位を通過する際にその細胞膜を損傷し，DNA が細胞外に放出されるのだと考えられた。さらに，ヘパリンが回路内圧上昇に関与している可能性が示唆された。ヘパリンは心臓手術において一般的に使用される抗凝固薬であるが，過去の報告で白血球にも影響を与えることが示されている。細胞外 DNA は模擬回路における回路内圧上昇の原因だけでなく，ダメージ関連分子パターン（Damage-associated molecular patterns、DAMPs）の一つであるため，人工心肺使用時に凝固線溶系の活性化や炎症反応を引き起こす原因となっているかもしれない。
Author 十時 崇彰
八島 望
伊藤 隆史
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  fullname: 十時 崇彰
  organization: 九州大学病院別府病院　麻酔科
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  fullname: 伊藤 隆史
  organization: 熊本大学大学院生命科学研究部　生体情報解析学講座
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Copyright 2025 一般社団法人　日本心臓血管麻酔学会
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鶴岡市立荘内病院 麻酔科
九州大学病院別府病院 麻酔科
山形大学医学部 麻酔科学講座
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DOI 10.11478/jscva.2024-1-008
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Mon Sep 01 00:08:29 EDT 2025
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Issue 1
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PublicationDecade 2020
PublicationTitle Cardiovascular Anesthesia
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PublicationYear 2025
Publisher 一般社団法人　日本心臓血管麻酔学会
日本心臓血管麻酔学会
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References 14) Ueki S, Melo RCN, Ghiran I, et al. Eosinophil extracellular DNA trap cell death mediates lytic release of free secretion-competent eosinophil granules in humans. Blood 2013; 121: 2074-83
13) Brinkmann V, Reichard U, Goosmann C, et al. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science 2004; 303: 1532-5
5) 後藤　健，小沼　武，松月　正，他．小児心臓手術での人工肺入口側圧力上昇と血小板減少に関する検討．体外循環技 2016; 43: 374-9
34) Jimenez-Alcazar M, Rangaswamy C, Panda R, et al. Host DNases prevent vascular occlusion by neutrophil extracellular traps. Science 2017; 358: 1202-6
25) Yamamoto K, Yamada H, Wakana N, et al. Augmented neutrophil extracellular traps formation promotes atherosclerosis development in socially defeated apoE－/－ mice. BBRC 2018; 500: 490-6
26) Stakos1 DA, Kambas K, Konstantinidis T, et al. Expression of functional tissue factor by neutrophil extracellular traps in culprit artery of acute myocardial infarction. Eur Heart J 2015; 36: 1405-14
17) Boe DM, Curtis BJ, Chen MM, et al. Extracellular traps and macrophages: new roles for the versatile phagocyte. J Leukoc Biol 2015; 97: 1023-35
7) Wahba A, Philipp A, Behr R, et al. Heparin-coated equipment reduces the risk of oxygenator failure. Ann thorac surg 1998; 65: 1310-12
35) Kolaczkowska E, Jenne CN, Surewaard BGJ, et al. Molecular mechanisms of NET formation and degradation revealed by intravital imaging in the liver vasculature. Nat Commun 2015; 6: 6673
4) Svenmarker S, Höggmark S, Jansson E, et al. Quality assurance in clinical perfusion. Eur J Cardio-Thorac Surg 1998; 14: 409-14
12) Yashima N, Ito T, Kajiyama K, et al. Leukocyte-derived extracellular DNA contributes to abnormal pressure elevation in the extracorporeal circulation circuit. Sci Rep 2020; 10: 474
15) Schorn C, Janko C, Latzko M, et al. Monosodium urate crystals induce extracellular DNA traps in neutrophils, eosinophils, and basophils but not in mononuclear cells. Front Immunol 2012; 3: 277
6) Myers GJ, Weighell PR, McCloskey BJ, et al. A multicenter investigation into the occurrence of high-pressure excursions. J ExtraCorpor technol 2003; 35: 127-32
8) 河端　賢，松井　勇，久保　公．体外循環開始後に人工心肺回路交換を経験して．体外循環技 2017; 44: 394-7
31) Barna G, Sebestyen A, Dunai ZA, et al. Heparin can liberate high molecular weight DNA from secondary necrotic cells. Cell Biol Int 2012; 36: 1281-86
20) Beaubien-Souligny W, Neagoe PE, Gagnon D,et al. Increased circulating levels of neutrophil extracellular traps during cardiopulmonary bypass. CJC Open 2020; 2: 39-48
32) Lelliott PM, Momota M, Shibahara T, et al. Heparin induces neutrophil elastase-dependent vital and lytic NET formation. Int Immunol 2020; 32: 359-68
16) Granger V, Faille D, Marani V, et al. Human blood monocytes are able to form extracellular traps. J Leukoc Biol 2017; 102: 775-81
27) Zhang D, Chen G, Manwani D, et al. Neutrophil ageing is regulated by the microbiome. Nature 2015; 525: 528-32
28) Finley A, Greenberg C. Heparin sensitivity and resistance: Management during cardiopulmonary bypass. Anesth Analg 2013; 116: 1210-22
2) Fisher AR, Baker M, Buffin M, et al. Normal and abnormal trans-oxygenator pressure gradients during cardiopulmonary bypass. Perfusion 2003; 18: 25-30
36) Wendel HP, Philipp A, Weber N, et al. Oxygenator thrombosis: worst case after development of an abnormal pressure gradient-incidence and pathway. Perfusion 2001; 16: 271-8
22) Zhang Y, Peng R, Pei SQ, et al. Neutrophil extracellular traps are increased after extracorporeal membrane oxygenation support initiation and present in thrombus: A preclinical study using sheep as an animal model. Thromb Res 2023; 221: 173-82
18) Rocha Arrieta YC, Rojas M, Vasquez G, et al. The lymphocytes stimulation induced DNA release, a phenomenon similar to NETosis. Scand J Immunol 2017; 86: 229-38
3) Blomböck M, Kronlund P, Åberg B, et al. Pathologic fibrin formation and cold-induced clotting of membrane oxygenators during cardiopulmonary bypass. J Cardiothorac Vasc Anesth 1995; 9: 34-43
21) Weber C, Jenke A, Chobanova V, et al. Targeting of cell-free DNA by DNase I diminishes endothelial dysfunction and inflammation in a rat model of cardiopulmonary bypass. Sci Rep 2019; 9: 19249
29) Mori K, Nakashima A, Sasaki S. Lymphocytes bursting induced by heparin, dextran sulfate and other polyanions. BBRC 1997; 234: 783-7
9) Fieldwalker MA, Jackson SC, Seal D. High transoxygenator pressure gradient in a patient with polycythemia vera. J Cardiothorac Vasc Anesth 2010; 24: 104-8
23) Wang Y, Wang W, Wang N, et al. Mitochondrial Oxidative Stress Promotes Atherosclerosis and Neutrophil Extracellular Traps in Aged Mice. Arteioscler Thromb Vasc Biol 2017; 37: e99-e107
33) Lazarowski ER, Santome JA, Behrens NH, et al. Aggregation of human-neutrophils by heparin. Thromb Res 1986; 41: 437-46
11) 八島　望．Chapter 5 トピックス．丸山征郎編．ファーマナビゲーター DIC 編【改訂版】．1版．東京，メディカルレビュー社；2019，pp 258-268
24) Warnatsch A, Ioannou M, Wang Q, et al. Neutrophil extracellular traps license macrophages for cytokine production in atherosclerosis. Science 2015; 349: 316-20
10) 曽山　奉，高橋　幸，吉田　秀，他．体外循環開始後早期にアルカレミア環境で出現する回路内の血液凝集塊形成．体外循環技 2016; 43: 339-51
1) 高井　浩，安野　誠，薗田　誠，他．人工心肺における安全管理の現状　JaSECT アンケート 2013 のインシデント報告より．体外循環技 2015; 42: 381-92
30) Cairo MS, Allen J, Higgins C, et al. Synergistic effect of heparin and chemotactic factor on polymorphonuclear keukocyte aggregation and de-granulation. Am J Pathol 1983; 113: 67-74
19) Yu X, Tan J, Diamond SL. Hemodynamic force triggers rapid NETosis within sterile thrombotic occlusions. J Thromb Haemost 2018; 16: 316-29
References_xml – reference: 11) 八島　望．Chapter 5 トピックス．丸山征郎編．ファーマナビゲーター DIC 編【改訂版】．1版．東京，メディカルレビュー社；2019，pp 258-268
– reference: 29) Mori K, Nakashima A, Sasaki S. Lymphocytes bursting induced by heparin, dextran sulfate and other polyanions. BBRC 1997; 234: 783-7
– reference: 35) Kolaczkowska E, Jenne CN, Surewaard BGJ, et al. Molecular mechanisms of NET formation and degradation revealed by intravital imaging in the liver vasculature. Nat Commun 2015; 6: 6673
– reference: 7) Wahba A, Philipp A, Behr R, et al. Heparin-coated equipment reduces the risk of oxygenator failure. Ann thorac surg 1998; 65: 1310-12
– reference: 27) Zhang D, Chen G, Manwani D, et al. Neutrophil ageing is regulated by the microbiome. Nature 2015; 525: 528-32
– reference: 34) Jimenez-Alcazar M, Rangaswamy C, Panda R, et al. Host DNases prevent vascular occlusion by neutrophil extracellular traps. Science 2017; 358: 1202-6
– reference: 32) Lelliott PM, Momota M, Shibahara T, et al. Heparin induces neutrophil elastase-dependent vital and lytic NET formation. Int Immunol 2020; 32: 359-68
– reference: 8) 河端　賢，松井　勇，久保　公．体外循環開始後に人工心肺回路交換を経験して．体外循環技 2017; 44: 394-7
– reference: 19) Yu X, Tan J, Diamond SL. Hemodynamic force triggers rapid NETosis within sterile thrombotic occlusions. J Thromb Haemost 2018; 16: 316-29
– reference: 3) Blomböck M, Kronlund P, Åberg B, et al. Pathologic fibrin formation and cold-induced clotting of membrane oxygenators during cardiopulmonary bypass. J Cardiothorac Vasc Anesth 1995; 9: 34-43
– reference: 2) Fisher AR, Baker M, Buffin M, et al. Normal and abnormal trans-oxygenator pressure gradients during cardiopulmonary bypass. Perfusion 2003; 18: 25-30
– reference: 33) Lazarowski ER, Santome JA, Behrens NH, et al. Aggregation of human-neutrophils by heparin. Thromb Res 1986; 41: 437-46
– reference: 4) Svenmarker S, Höggmark S, Jansson E, et al. Quality assurance in clinical perfusion. Eur J Cardio-Thorac Surg 1998; 14: 409-14
– reference: 16) Granger V, Faille D, Marani V, et al. Human blood monocytes are able to form extracellular traps. J Leukoc Biol 2017; 102: 775-81
– reference: 9) Fieldwalker MA, Jackson SC, Seal D. High transoxygenator pressure gradient in a patient with polycythemia vera. J Cardiothorac Vasc Anesth 2010; 24: 104-8
– reference: 36) Wendel HP, Philipp A, Weber N, et al. Oxygenator thrombosis: worst case after development of an abnormal pressure gradient-incidence and pathway. Perfusion 2001; 16: 271-8
– reference: 23) Wang Y, Wang W, Wang N, et al. Mitochondrial Oxidative Stress Promotes Atherosclerosis and Neutrophil Extracellular Traps in Aged Mice. Arteioscler Thromb Vasc Biol 2017; 37: e99-e107
– reference: 6) Myers GJ, Weighell PR, McCloskey BJ, et al. A multicenter investigation into the occurrence of high-pressure excursions. J ExtraCorpor technol 2003; 35: 127-32
– reference: 17) Boe DM, Curtis BJ, Chen MM, et al. Extracellular traps and macrophages: new roles for the versatile phagocyte. J Leukoc Biol 2015; 97: 1023-35
– reference: 1) 高井　浩，安野　誠，薗田　誠，他．人工心肺における安全管理の現状　JaSECT アンケート 2013 のインシデント報告より．体外循環技 2015; 42: 381-92
– reference: 20) Beaubien-Souligny W, Neagoe PE, Gagnon D,et al. Increased circulating levels of neutrophil extracellular traps during cardiopulmonary bypass. CJC Open 2020; 2: 39-48
– reference: 21) Weber C, Jenke A, Chobanova V, et al. Targeting of cell-free DNA by DNase I diminishes endothelial dysfunction and inflammation in a rat model of cardiopulmonary bypass. Sci Rep 2019; 9: 19249
– reference: 10) 曽山　奉，高橋　幸，吉田　秀，他．体外循環開始後早期にアルカレミア環境で出現する回路内の血液凝集塊形成．体外循環技 2016; 43: 339-51
– reference: 14) Ueki S, Melo RCN, Ghiran I, et al. Eosinophil extracellular DNA trap cell death mediates lytic release of free secretion-competent eosinophil granules in humans. Blood 2013; 121: 2074-83
– reference: 30) Cairo MS, Allen J, Higgins C, et al. Synergistic effect of heparin and chemotactic factor on polymorphonuclear keukocyte aggregation and de-granulation. Am J Pathol 1983; 113: 67-74
– reference: 18) Rocha Arrieta YC, Rojas M, Vasquez G, et al. The lymphocytes stimulation induced DNA release, a phenomenon similar to NETosis. Scand J Immunol 2017; 86: 229-38
– reference: 12) Yashima N, Ito T, Kajiyama K, et al. Leukocyte-derived extracellular DNA contributes to abnormal pressure elevation in the extracorporeal circulation circuit. Sci Rep 2020; 10: 474
– reference: 24) Warnatsch A, Ioannou M, Wang Q, et al. Neutrophil extracellular traps license macrophages for cytokine production in atherosclerosis. Science 2015; 349: 316-20
– reference: 5) 後藤　健，小沼　武，松月　正，他．小児心臓手術での人工肺入口側圧力上昇と血小板減少に関する検討．体外循環技 2016; 43: 374-9
– reference: 22) Zhang Y, Peng R, Pei SQ, et al. Neutrophil extracellular traps are increased after extracorporeal membrane oxygenation support initiation and present in thrombus: A preclinical study using sheep as an animal model. Thromb Res 2023; 221: 173-82
– reference: 15) Schorn C, Janko C, Latzko M, et al. Monosodium urate crystals induce extracellular DNA traps in neutrophils, eosinophils, and basophils but not in mononuclear cells. Front Immunol 2012; 3: 277
– reference: 13) Brinkmann V, Reichard U, Goosmann C, et al. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science 2004; 303: 1532-5
– reference: 25) Yamamoto K, Yamada H, Wakana N, et al. Augmented neutrophil extracellular traps formation promotes atherosclerosis development in socially defeated apoE－/－ mice. BBRC 2018; 500: 490-6
– reference: 28) Finley A, Greenberg C. Heparin sensitivity and resistance: Management during cardiopulmonary bypass. Anesth Analg 2013; 116: 1210-22
– reference: 26) Stakos1 DA, Kambas K, Konstantinidis T, et al. Expression of functional tissue factor by neutrophil extracellular traps in culprit artery of acute myocardial infarction. Eur Heart J 2015; 36: 1405-14
– reference: 31) Barna G, Sebestyen A, Dunai ZA, et al. Heparin can liberate high molecular weight DNA from secondary necrotic cells. Cell Biol Int 2012; 36: 1281-86
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「抄録」人工心肺使用時の異常な回路内圧上昇は国内外問わず報告されており, 人工肺交換を要する可能性のある危険な現象である. その原因として血栓形成などが推測されているが, 血栓の存在を証明できた報告は少なく, 回路内圧上昇の原因やメカニズムは解明されていなかった. そこで,...
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SourceType Publisher
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SubjectTerms ヘパリン
人工心肺回路内圧上昇
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細胞外 DNA
Title 人工心肺回路内圧上昇における白血球の関与
URI https://www.jstage.jst.go.jp/article/jscva/29/1/29_2024-1-008/_article/-char/ja
http://mol.medicalonline.jp/en/journal/download?GoodsID=ca4crbam/2025/002901/004&name=0037-0044j
Volume 29
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ispartofPNX Cardiovascular Anesthesia, 2025/09/01, Vol.29(1), pp.37-44
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